Ярославль, Ярославская область, Россия
сотрудник
Ярославль, Ярославская область, Россия
Изучена кинетика окисления первичных спиртов и метиллинолеата в мицеллах додецилсульфата натрия. Установлено влияние pH на скорость процесса. Показано, что строение спирта, определяя его расположение в мицеллярной системе, влияет на характер процесса.
этанол, октанол, метиллинолеат, додецилсульфат натрия, 2,2`-азобис(2-метилпропионамид) дигидрохлорид
1. Меньщикова Е.Б., Ланкин В.З., Зенков Н.К., Бондарь И.А., Крутовых Н.Ф., Труфакин В.А. Окислительный стресс. Прооксиданты и антиоксиданты. М.: Слово, 2006. 556 с.
2. Pratt D., Tallman K., Porter N. Free Radical Oxidation of Polyunsaturated Lipids: New Mechanistic Insights and the Development of Peroxyl Radical Clocks N. Acc. Chem. Res. 2011. V. 44. N 6. P. 458–467. DOI:https://doi.org/10.1021/ar200024c.
3. Garrec J., Monari A., Assfeld X., Mir L.M., Tarek M. Lipid Peroxidation in Membranes: The Peroxyl Radical Does Not “Float”. J. Phys. Chem. Lett. 2014. V. 5. P. 1653–1658.
4. Roginsky V. Chain-breaking antioxidant activity of natural polyphenols as determined during the chain oxidation of methyl linoleate in Triton X-100 micelles. Arch. Biochim. Biophys. 2003. V. 414. P. 261-270. DOI:https://doi.org/10.1016/s0003-9861(03)00143-7.
5. Grebowski J., Konopko A., Krokosz A., DiLabio G. A., Litwinienko G. Antioxidant activity of highly hydroxylated fullerene C60 and its interactions with the analogue of α-tocopherol. Free Radical Biology and Medicine. 2020. V. 160. P. 734-744. DOI:https://doi.org/10.1016/j.freeradbiomed.2020.08.017
6. Kasaikina O., Mengele E., Plashchina I. Oxidation of nonionic surfactants with molecular oxygen. Colloid J. 2016. V. 78. P. 730-734. DOI:https://doi.org/10.1134/S1061933X16060065.
7. Рогинский В.А. Кинетика цепного окисления метиллинолеата в мицеллярных растворах додецилсульфата натрия. Кинетика и катализ. 1996. Т. 37. № 4. С. 521–527.
8. Hossain M., Blanchard G.J. Effects of ethanol and n-butanol on the fluidity of supported lipid bilayers. Chemistry and Physics of Lipids. 2021. V. 238. P. 105091. DOI:https://doi.org/10.1016/j.chemphyslip.2021.105091
9. Соколов А., Попов С., Плисс Е., Лошадкин Д. Программа для ЭВМ "Кинетика 2012 - программа для расчета кинетических параметров химических и биохимических процессов" Официальный бюллетень Федеральной службы по интеллектуальной собственности "Программы для ЭВМ. Базы данных. Топологии интегральных микросхем". 2013. № 3.
10. Loshadkin D., Pliss E., Kasaikina O. Features of methyl linoleate oxidation in Triton X-100 micellar buffer solutions. J. Appl. Chem. 2020. V. 93. N 7. P. 1090-1095. DOI:https://doi.org/10.31857/S0044461820070178
11. Pliss E.M., Soloviev M.E., Loshadkin D.V., Molodochkina S.V., Kasaikina O.T. Kinetic model of polyunsaturated fatty acids oxidation in micelles. Chemistry and Physics of Lipids. 2021. V. 237. P. 105089. DOI:https://doi.org/10.1016/j.chemphyslip.2021.105089
12. Roginsky V., Barsukova T. Superoxide dismutase inhibits lipid peroxidation in micelles. Chem. Phys. Lipids. 2001. V. 111. P. 87-91. DOI:https://doi.org/10.1016/s0009-3084(01)00148-7.
13. Denisov E., Afanas'ev I. Oxidation and Antioxidants in Organic Chemistry and Biology. Boca Raton: CRC Press, 2005. 1024 p. DOI:https://doi.org/10.1201/9781420030853.
14. Richauda E., Audouina L., Fayollea B., Verdua J., Matisová-Rychlá L., Rychly´ J. Rate constants of oxidation of unsaturated fatty esters studied by chemiluminescence. Chemistry and Physics of Lipids. 2012. V. 165. P. 753–759. DOI:https://doi.org/10.1016/j.chemphyslip.2012.09.002
15. Xu L., Davis T. A.†, Porter N.A. Rate Constants for Peroxidation of Polyunsaturated Fatty Acids and Sterols in Solution and in Liposomes. J. Am. Chem. Soc. 2009. V. 131. P. 13037–13044. DOI:https://doi.org/10.1021/ja9029076
